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涨知识 | qPCR专场六:一文读懂qPCR文章金标准-MIQE

作者:翌圣生物科技(上海)股份有限公司 2023-09-15T00:00 (访问量:21812)

荧光定量PCR是实验室中出镜率非常高的一种检测方法。该方法通过在PCR体系中添加荧光基团来记录DNA产物的累积情况,从而达到对PCR过程进行实时监控的目的,并且可以通过数据分析计算出起始模板量,这就是“荧光定量”中“定量”一词的来源。


荧光定量PCR实验因为灵敏度高所以经常是差之毫厘谬以千里,所以在实验过程中,我们需要注意诸多细节,谨慎操作。小伙伴们看到这里就要着急了,我怎样才能做好qPCR实验,拿到实验结果,发表高分文章,走上人生巅峰呢?

 

日常在进行qPCR时,需要注意多个操作细节,有时稍不留意就会拿到奇怪的实验结果或拿不到数据结果。另外在最后的数据计算及统计学分析上,不同人对于数学的理解不同,会导致不同的实验出现相同的结果,不同的人对同份数据进行分析,得出的结论也不相同。发表的文章如果缺乏充足的实验细节,将会妨碍审稿人、编辑等对于结果质量的评估,或者让小伙伴难以根据文章重复实验。

2009年,Stephen A等人发表文章《The MIQE Guidelines: Minimum Information for Publication of Quantitative Real-Time PCR Experiments》,这是一群qPCR大牛经过商讨制定的qPCR实验和发表文章指南,其目的是为了作者根据指南提供相关的实验条件和实验特点,审稿人据此可以评价实验所用方法的可靠性,其他研究人员也可以利用这些信息进行重复实验。

MIQE指南由9个部分组成,共涉及85个参数,以保证qPCR实验的实用性、准确性和可重复性。这9 部分包括实验设计、样本、核酸提取、反转录、靶标基因、qPCR引物和探针、qPCR实验报告、qPCR合理性和数据分析。85个参数针对qPCR结果的重要性,分为了两类:其中标记为“E”表示必须(essential),标记为“D”表示建议(desirable)。

 

01
实验设计

 

科学准确的实验设计是基因表达分析研究的关键。由于在整个研究过程中,目的RNA的转录易受到研究过程中其他无关的外部刺激因素干扰,因此严格设计实验条件的工作十分重要。重要内容包括了确定实验组和对照组的条件、重复组的类型和数量(例如生物重复和技术重复)、实验程序、实验进行条件以及各组内样品的处理方法等等。

 

02
样本采集与处理

 

样本采集可能是实验变异的第一个变异来源,尤其是RNA相关的实验,因为RNA容易被样本的采集和处理方式干扰而不稳定。建议将新鲜组织保存在低温环境中。样本采集时应相当谨慎,应详细记录组织样本的采集以及是否及时处理等信息。如果样本没有及时处理,需记录是如何保存的,以及在什么情况下保存了多长时间。

 

03
核酸提取与质量控制

 

核酸提取是第二个关键步骤,尤其是RNA提取,确保使用高纯度和未降解的RNA是荧光定量PCR实验中最关键的一点。提取效率取决于样本类型、样本密度、样本来源的生理状态、样本处理量等等。这些过程细节对于组织中提取RNA的数量和质量影响重大,故需记录核酸提取方法的细节。

针对提取得到的RNA等核酸进行量化十分重要,尤其是在比较分析不同样本时,RNA等核酸投入一致或类似的数量能够避免一系列不确定因素。另外RNA等核酸的质量评估也必不可少。常见的量化和质量评估方法有多种,最为常见的是分光光度法,但需要注意的是A260/A280比值必须在中性PH值buffer中进行测量,吸光度比值会受到DNA或者残余苯酚的影响而改变且不能评估核酸是否发生降解,故最好搭配其他检测方法,例如琼脂糖凝胶电泳、或者是参考基因/靶基因3‘:5’完整性检测。如果RNA样本部分降解,该信息在发表文章时需要告知,因为低水平转录检测的敏感性可能降低,其中降解带来的差异可能会造成不同的实验结论。

RNA提取过程中也应包括DNA酶处理步骤,用以去除相关的基因组DNA污染。建议对RNA样本是否经过DNA酶处理(包括DNase类型和反应条件)等做好记录。

核酸中杂质残留的检测应通过稀释样本做反转录以检测反转录活性或PCR抑制程度,或者采用SPUD等抑制实验。

 

04
反转录

 

由于环境中普遍存在RNA酶,建议在RNA质量评估后立即将RNA样本反转录成cDNA,从而避免RNA多次反复冻融造成的降解风险。反转录时,建议使用相同数量的RNA进行1次或3次反转,并保证所有实验的反转录时间相同,从而最小化生物重复之间的变异性。对于RNA转化成cDNA的方法和试剂描述必不可少,例如RNA投入量,试剂的详情,酶投入量,温度,反应时间和操作步骤等等。

 

05
qPCR

 

qPCR分析时,须准备好以下信息:每个靶标基因和内参基因的database accession numbers,每个引物和任何探针的外显子位点,每个寡核苷酸的序列和浓度,包括性质、位点和结合任何染料和/或修饰碱基。还需要聚合酶的浓度和特性,每个反应模板的质量,镁离子的浓度,缓冲液的确切化学成分和反应体积。对应使用的仪器型号、耗材和所有PCR反应条件信息也应做好记录。耗材多为塑料制品,不同制造商的塑料在荧光反射和灵敏度方面表现出很大差异。96孔板使用时,密封方法的不同也会影响板材周边样品的蒸发。

 

由于扩增效率高度依赖于所用的引物,因此也需要将序列进行公开。
 
01
 
引物的二级结构

核酸的结构(例如茎环二级RNA结构)对于反转录和PCR的效率有着重要的影响。故而引物、探针和PCR扩增产物的位点需考虑到RNA的折叠。

02
 
引物的特异性

引物的特异性需用直接的实验数据验证有效性,例如凝胶电泳、熔解曲线、DNA测序、扩增子大小、和/或限制性酶切验证。一些引物优化的证据或方案最好也可提供,理想的形式是退火温度梯度或Mg2+浓度梯度摸索并以Cq值、荧光与循环曲线图的形式呈现数量和/或熔解曲线。

03
 
质控和定量标准

所有qPCR反应都需要进行额外的质控或定量标准品,例如使用NTC检测PCR污染。每96孔板或每批样品上样应包括NTC,并确定数据不符合的条件,举个例子,如果未知最低浓度的Cq值为35,则可以忽略Cq值≥40的NTC。

04
 
性能分析

4.1扩增效率

稳定和精确的荧光定量PCR检测通常和高效的扩增效率相关。尤其当检测经内参基因校准的目的基因mRNA浓度时,扩增效率尤为重要。△△Cq法是测定样品间不同基因表达情况最常用的方法之一,是基于单个内参基因的校准进行的。计算靶标基因和内参基因的Cq值的差异,并直接比较不同样本之间的△Cq,这种情况需要两个基因能以可比的效率进行扩增,方能进行比较。

 

扩增效率必须通过标准曲线来确定,因为这种校准方法提供了一个简单、快速以及可重复扩增效率、分析敏感性和实验稳定性的平均指标。扩增效率根据标准曲线对数线性部分的斜率确定。每个靶标基因的的标准曲线需提交在稿件中,这样审稿人能够看到。

 

4.2线性动态范围

根据生成的标准曲线的模板,动态范围应至少包括3个数量级,理想状态是5或6 Log10浓度。标准曲线的线性区间需包括被定量的靶标基因的区间。由于定量下限通常定义不明确,应当确定线性区间内最低浓度的变化。同时需要展示相关系数(R2 值)

 

4.3灵敏度(LOD)

LOD的定义是可以检测到95%的阳性样品的最低浓度。换言之,在一组含有目的基因的重复实验中,在LOD浓度下,不应发生超过5%的失败反应。实际上,我们可以通过有限稀释法来检测,失败和成功反应的百分比覆盖泊松分布即可。

 

4.4精度

荧光定量PCR结果的变化有多种原因,包括温度的差异可影响退火或变性,移液误差引起的浓度差异和随机变化。qPCR精度和浓度相关,一般随着拷贝数的降低而降低。理想情况下,实验内的重复性应当以SD error bar或具有重复样品的标准曲线上的CIs的形式显示在图中。CVs不应与Cqs一起使用,但可用于表达拷贝数或浓度的差异。

05
 
多重荧光定量PCR

多重实验大大扩展了qPCR分析的能力,特别是应用于同时检测点突变或多态性检测。多重荧光定量PCR实验需要证明多个靶标的准确量化在同一管中不会受到干扰,即,扩增效率和灵敏度和进行单重实验时是一致的。这点当丰度较低的靶标基因和丰度高的靶标基因进行共同扩增时尤为重要。

 

06
数据分析

 

数据分析包括对原始数据的检查、对数据质量和可靠性的评估,以及生成可报告的结果。

 
01
 
均一化

均一化是进行科学qPCR分析的一个重要组成部分,该过程控制核酸抽提效率、反转录效率和扩增效率的变化,从而能够比较不同样本的RNA浓度。使用内参基因作为内部对照是最常见的均一化RNA数据的方法。均一化包括靶标基因和内参基因的RNA浓度之比。内参基因的RNA应稳定表达,其基因丰度与样品中mRNA总量呈现强相关。


均一化通常不能用一个内参基因,除非作者可为审稿人提供明确的证据证实内参基因在其实验条件下表达恒定。内参基因的最佳数目和选择需通过文章具体实验确定并报告方法。

02
 
变异性

生物体本身固有的变异性可能与组间的实验差异相匹敌,甚至超过后者。尤其是使用许多生物学重复来提高实验的统计学重要性时,这种变化就变得显而易见。虽然生物重复间的差异可能很大,但是足够数量的样本可以减少实验差异性。许多因素会导致实验变异,从而影响到达统计所需的生物重复的数量。因此,功效分析(power analysis)有助于确定有效可靠结论所需的样本数。

03
 
定性分析

使用PCR仅检测核酸是否存在,而不是对其进行准确定量,被称为定性PCR,该方式广泛应用于病原体诊断。PCR方法定性/定量分层问题在于,准确回答是或否,需要低敏感性PCR实验的敏感性信息。因此,即使是定性分析也应提供有关分析能力的相关信息。

 

07
术语统一
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
01
实时定量PCR的简写

建议将缩写qPCR用于real-time PCR,并将RT-qPCR用于反转录-qPCR。将RT-PCR简称为qPCR会引起混淆,并且与传统RT-PCR的应用不符。

02

内参基因

内参基因应当指的是参照基因(reference genes),而不是管家基因(housekeeping genes)。

03
TaqMan探针

TaqMan探针应指为水解探针(hydrolysis probes)。

04
FRET probe

FRET probe (fluorescence resonance energy transfer probe, 荧光共振能量转移探针)指的是一种机制,指发射/猝灭依赖于两个荧光染料分子的电子激发态之间相互作用。LightCycler型探针指的是双杂交探针(dual hybridization probes) 。

05
定量 quantification

牛津英语词典只列出了定量(quantification),非定量(non-quantification),因quantification是恰当的,而不是quantitation。

06
Cq

现在文献中使用的阈值循环(threshold cycle, Ct),交点(crossing point, Cp)和分支点(take-off point, TOP) 与PCR循环的术语不一致。这些术语指的实际上是相同的值,只是由于不同仪器厂家由于产品差异化的原因造成的,不具有科学的准确性和清晰性。根据RDML(Real-Time PCR Data Markup Language)数据标准,建议统一使用定量循环(quantification cycle, Cq)这个术语。

 

※该指南的目的主要有三个:
1. 让作者能够设计和报告具有更大内在价值的qPCR实验。
2. 给到审稿人和编辑既定标准用于衡量所收稿件的技术质量。
3.遵守指南中的准则,人们可以更容易地重复已发表研究中所描述的实验。
 
以上是对qPCR金标准指南-MIQE的介绍,相信小伙伴们通过小翌的介绍,对MIQE指南已经有一定的了解啦。关于如何做好qPCR实验,小翌会陆续在公众号里传授秘籍哒,敬请期待哦。

 

 

 
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